Открыть главное меню
Экстракт хлорофилла в спирте освещённый белым светом (сверху) и ультрафиолетом, вызывающим его флуоресценцию (снизу).

Флуоресценция хлорофилла — явление свечения хлорофилла при поглощении им света, происходит в результате возвращения молекулы из возбужденного в основное состояние. Широко используется как показатель фотосинтетического преобразования энергии у высших растений, водорослей и бактерий. Возбужденный хлорофилл теряет поглощенную световую энергию, растрачивая её на фотосинтез (фотохимические преобразования энергии или фотохимическое тушение), переводя её в тепло в результате нефотохимического тушения или излучая в виде флуоресценции. Поскольку все эти процессы конкурируют друг с другом, анализируя флуоресценцию хлорофилла, можно получить представления об интенсивности фотосинтеза и здоровье растения[1].

Содержание

Эффект КаутскогоПравить

После освещения адаптированных к темноте листьев, можно наблюдать быстрый рост флуоресценции Фотосистемы II (ФС II) за которым следует медленный спад. Впервые этот феномен описали Х. Каутский и А. Хирш в 1931 году. По имени своего первооткрывателя эффект был назван эффектом Каутского.

Увеличение флуоресценции происходит из-за того, что реакционные центры фотосистемы II (ФСII) переходят в «закрытое» состояние. Реакционный центр называется «закрытым», когда он больше не в состоянии передавать электроны. Это происходит, когда вышележащий переносчик электронов восстановлен и ещё не передал свои электроны следующему акцептору электронов. Закрытие реакционных центров снижает общую эффективность фотохимических реакций (kP), а потому повышает уровень флуоресценции (kF). Резкий перенос листа из темнового состояния на свет увеличивает долю закрытых реакционных центров ФСII и приводит к усилению флуоресценции в течение первых 1-2 секунд. Позже флуоресценция медленно ослабевает, этот процесс может идти в течение нескольких минут. Падение обусловлено активацией «фотохимическо тушения» и переноса электронов от ФСII по ЭТЦ хлоропластов к НАДФ и циклу фиксации углерода, а также включением механизмов нефотохимического тушения, которое преобразует энергию возбуждения в тепло.

Измерения флуоресценцииПравить

 
Флуориметр используется для полевого измерения FV/FM.

Измерения начинают с определения фонового уровня флуоресценции  , который измеряют, воздействуя на лист короткой вспышкой света низкой интенсивности (для приборов типа PAM), недостаточной что бы вызвать фотохимическую реакцию (все реакционные центры открыты), и потому полностью идущей на флуоресценцию[2].

Что бы использовать измерение флуоресценции хлорофилла для анализа фотосинтеза, исследователи должны различать фотохимическое тушения и нефотохимическое тушение (тепловыделение). Это достигается путём остановки фотохимических реакций, что позволяет исследователям измерить флуоресценцию в присутствии только нефотохимического тушения. Для этого растение резко освещают сильной вспышкой света или выносят на свет после темновой адаптации. Происходит временное закрытие всех реакционных центров ФСII, и энергия не передается по цепи переносчиков электронов. Нефотохимическое тушение не оказывает влияния, если вспышка достаточно короткая. Во время вспышки (или после резкого выноса растения на свет из темноты) происходит насыщение реакционных центров светом с переходом в закрытое состояние. В таких условиях, когда отсутствует какое-либо фотохимическое тушение, а не фотохимическое тушение пренебрежительно мало, флуоресценции достигает своего максимального уровня, обозначаемого как максимум флуоресценции  [2].

Эффективность фотохимического тушения, по которому определяют эффективность работы ФСII, можно оценить сравнивая   со стационарным уровнем флуоресценции на свету   и фоновый уровень флуоресценции   в отсутствие света пригодного для фотосинтеза. Эффективность нефотохимического тушения изменяется в зависимости от различных внутренних и внешних факторов. Его усиление ведёт к повышению тепловыделения и снижению  . Поскольку невозможно полностью остановит тепловую диссипацию энергии, то невозможно измерить флуоресценцию хлорофилла при полном отсутствии нефотохимического тушения. Поэтому исследователи используют точку темновой адаптации ( ) с которой сравнивают рассчитанное значение нефотохимическое тушения[2].

Общие параметры флуоресценцииПравить

 : Минимальная флуоресценция (в относительных единицах). Уровень флуоресценции в условиях, когда предполагается, что все реакционные центры открытые (темновая адаптация).

 : Максимальная флуоресценция (в относительных единицах). Уровень флуоресценции при вспышках высокой интенсивности. Все реакционные центры считаются закрытыми.

 : Минимальная флуоресценция (в относительных единицах) в условиях адаптации к свету. Уровень флуоресценции облучаемого образца, который снижен по сравнению с   из-за наличия нефотохимическое тушение.

 : Максимальная флуоресценция (в относительных единицах) в условиях адаптации к свету. Уровень флуоресценции образца, облучаемого насыщающими импульсами света, которые временно закрывают все реакционные центры ФСII.

 : Терминальная флуоресценция (в относительных единицах). Тушение флуоресценции по состоянию на конец теста.

 : Половина времени нарастания от   до  .

Расчётные параметрыПравить

 : Вариабельная флуоресценция. Рассчитывается как   =   —  [3].

 : Отношение переменной флуоресценции и максимальной флуоресценции. Рассчитывается как  .[4]. Является мерой максимальной эффективности ФСII (если все центры были открыты).   можно использовать для оценки потенциальной эффективности ФСII, если измерять образцы в условиях темновой адаптации.

 : Фотохимическое тушение. этот параметр даёт приблизительную оценку доли открытых реакционных центров ФСII. Рассчитывается как  [5].

 : Эффективность фотохимических реакций фотосистемы II. Рассчитывается как   =  [6]. Этот параметр показывает долю света, поглощённого ФСII, который использовался в фотохимических реакциях. Как таковой, он может дать измерение скорости линейного транспорта электронов и поэтому характеризует весь фотосинтез в целом.

  даёт оценку эффективности фотосинтеза, а   и   говорят нам какие процессы влияют на эффективность. Закрытие реакционных центров в результате высокой интенсивности света изменит значение  . Изменения в эффективности нефотохимического тушения изменит соотношение  .

Практическое использованиеПравить

Эффективность фотосистемы II как мера фотосинтезаПравить

 
Измерение уровня фотосинтеза Y(II) при помощи портативного флуориметра в полевых условиях.

Флуоресценция хлорофилла используется для измерения уровня фотосинтеза, но по сути своей это чрезмерное упрощение. По флуоресценции можно измерить эффективность фотохимии ФСII, которую можно использовать для оценки скорости линейного транспорта электронов путём умножения на интенсивность света. Однако, когда исследователи говорят «фотосинтез», они обычно подразумевают фиксацию углерода. Транспорт электронов и фиксация CО2 имею довольно хорошую корреляцию, но её может не наблюдаться в полевых условиях из-за таких конкурирующих процессов как фотодыхание, азотистый обмен и реакция Мелера.

Связь транспорта электронов с фиксаций углекислого газаПравить

Для одновременного измерения флуоресценции хлорофилла и газообмена, чтобы получить полную картину реакции растений на их окружение необходима серьёзная и сложная исследовательская техника. Один из методов заключается в одновременном измерении фиксации СО2 и фотохимических реакций ФСII при различной интенсивности света, в условиях подавляющих фотодыхание. Графики фиксации СО2 и фотохимических реакций ФСII позволяют вычислить количество электронов, необходимых для ассимиляции одной молекулы СО2. Исходя их этой оценки можно оценить уровень фотодыхания. Этот метод используется для исследования значимости фотодыхания в качестве фотозащитного механизма во время засухи.

  • Собраду (2008)[7] исследовал газообмен и флуоресценцию хлорофилла в ответ на высокую интенсивность света у пионерных и лесных видов. В полдень производился замер газообмена листьев с измерением общего уровня фотосинтеза и межклеточной концентрации СО2 ( ). В тех же листьях измерялись параметры флуоресценция хлорофилла (фоновая  ; максимум  ; и переменная,  ). Результаты показали, что, несмотря на то, что пионерные и лесные виды происходят из разных местообитаний, и те и другие показали схожую уязвимость к полуденному фотоингибированию.

Измерение уровня стресса и стрессоустойчивостиПравить

Флуоресценция хлорофилла позволяет измерить уровень стресса растений. По её уровню можно судить об уровне воздействия абиотических стрессов, поскольку экстремальные температуры, избыточное освещение и засуха негативно влияют на метаболизм растений. Это в свою очередь приводит к дисбалансу между поглощением световой энергии хлорофиллом и использованием этой энергии в процессе фотосинтеза[8].

  • Фаваретто и соавт. (2010)[9] исследовали адаптацию к сильному свету у пионерных и поздних сукцессионных видов, выращенных в условиях 100 % (на солнце) и 10 % (в тени) от нормального освещения. Снижение   при полном освещении оказалось больше у поздних сукцессионных видов, чем у пионерных видов. В целом эти результаты показывают, что пионерные виды лучше растут при полном освещении, чем позднесукцессионные виды, что предполагает наличие у них высокой толерантности к фотоокислительным повреждениям.
  • Неоклеус и Vasilakakis (2009)[3] исследовали реакциюмалины на бор и солевой стресс. При помощи флуориметра они замерили  ,   и  . Флуоресценция хлорофилла листа незначительно зависела от концентрации NaCl, когда концентрация бора была низкой. Когда концентрацию бора увеличивали, флуоресценция хлорофилла листьев снижалась тех же условиях засоления. Можно сделать вывод, что комбинированное воздействие бора и NaCl на малину вызывает токсический эффект, влияя на фотохимические параметры.

Индекс азотистого балансаПравить

 
Пример многопараметрического портативного флуориметра, который измеряет соотношение между хлорофиллом и флавоноидами, чтобы обнаружить дефицит азота у растений.

Учитывая связь между содержанием хлорофилла и азота в листьях, содержание хлорофилла можно использовать для обнаружения дефицит азота у растений. Для этого существует несколько разных методов.

Оказалось, что можно судить об азотистом метаболизме растений по уровню полифенолов. Когда растение находится в оптимальных условиях, это способствует нормальному обмену веществ и синтезу белков (основная форма биологического азота), хлорофиллов, и небольшого количества флавоноидов (вторичные метаболиты). С другой стороны, в случае нехватки азота, наблюдается повышенная выработка флавоноидов[10].

Индекс азотистого баланса позволяет оценить содержание азота в естественных условиях путём расчета соотношения между хлорофиллом и флавоноидами.

Измерение содержания хлорофиллаПравить

Гительзон (1999) постулировал: «Соотношение между флуоресценцией хлорофилла при 735 нм и в диапазоне длин волн от 700 нм до 710 нм, линейно связано с содержанием хлорофилла (с коэффициентом детерминации r2 более чем 0,95) и таким образом может быть использовано как точный показатель содержания хлорофилла в листьях растений.»[11]

ФлуориметрыПравить

 
Флуоресцентное изображение (параметр Ft) наружной поверхности листьев (32 х 24 мм), измеренная с помощью ПАМ-флуориметра

Развитие флуориметров сделало измерение флуоресценции хлорофилла обычным методом в физиологии растений. Революцию в анализе флуоресценции хлорофилла произвело изобретение методики пульс-амплитудной модуляции (англ. Pulse-Amplitude-Modulation (PAM))[12][13] и появление первого коммерческого импульсного флуориметра или ПАМ-флуориметра PAM-101 (компания Walz, Германия). Путём модуляции амплитуды измеряющего светового пучка (микросекундный диапазон импульсов) и параллельного обнаружения возбуждаемой флуоресценции, можно определить относительный выход флуоресценции (Ft) в присутствии рассеянного света. Принципиально, это означает, что флуоресценция хлорофилла можно измерять в полевых условиях даже под прямыми лучами солнца[2].

Некоторые импульсные флуориметры могут определить как световые параметры, так и параметры темновая адаптация параметров (Fo, Fm, Fo', Fm', Fv/Fm, Y, Ft, Foq) и могут рассчитать коэффициенты тушения фотохимического и нефотохимического тушение (qP, qL, qN, Y(NO), Y(NPQ) и NPQ). Некоторые флуориметры полностью портативны и управляется одной рукой.

Развитие системы визуализации облегчило определение пространственных неоднородностей у фотосинтетически активных образцов. Эти неоднородности возникают в листья растений, например из-за наростов, различных экологических стрессов или возбудителя инфекции. Знания о неоднородностях образца имеет важное значение для правильной интерпретации результатов измерения фотосинтетической продуктивности образца. Высокие показатели качества изображения обеспечивают возможность анализа одной клетки или даже одного хлоропласта, а также площадей, охватывающих целые листья или растения.

Альтернативные подходыПравить

LIF-сенсорыПравить

Методы, основанные на эффекте Каутского, не исчерпывают всего многообразия методов измерения флуоресценции хлорофилла. В частности, последние достижения в области лазер-индуцированной флуоресценции (LIF) предоставляют возможность для разработки достаточно компактных и эффективных сенсоров для определения фотофизиологического статуса и оценки биомассы. Вместо измерения общего потока флуоресценции такие датчики регистрируют оптическую плотность этого потока, возбуждённого сильным лазерными импульсами наносекундной длительности. Такой метод не требует 15 — 20 мин темновой адаптации (как в случае с методами, основанными на эффекте Каутского[14]) и даёт возможность возбуждать образец со значительного расстояния. LIF-сенсоры могут обеспечить быструю и оценку с довольно большого расстояния.

См. такжеПравить

ПримечанияПравить

  1. Lu Congming, Zhang Jianhua. Effects of Water Stress on Photosystem II Photochemistry and Its Thermostability in Wheat Plants (англ.) // Oxford Journals : journal. — 1999. — July.
  2. 1 2 3 4 Chlorophyll fluorescence—a practical guide. Jxb.oxfordjournals.org (1 апреля 2000). Дата обращения 28 марта 2011.
  3. 1 2 Effects of Boron and Salinity on Red Raspberry in Vitro - International Journal of Fruit Science. Informaworld.com (3 декабря 2008). Дата обращения 28 марта 2011.
  4. Kitajima M., Butler W.L. Quenching of chlorophyll fluorescence and primary photochemistry in chloroplasts by dibromothymoquinone. (англ.) // Biochim Biophys Acta (англ.) : journal. — 1975. — Vol. 376. — P. 105—115. — DOI:10.1016/0005-2728(75)90209-1.
  5. Schreiber U., Schliwa U., Bilger W. Continuous recording of photochemical and non-photochemical chlorophyll fluorescence quenching with a new type of modulation fluorometer. (англ.) // Photosynth Res : journal. — Vol. 10. — P. 51—62. — DOI:10.1007/bf00024185.
  6. Genty B., Briantais J-M, Baker N.R. The relationship betwwen the quantum yield of photosynthetic electron transport and quenching of chlorophyll fluorescence. (англ.) // Biochem Biophys Acta (англ.) : journal. — 1989. — Vol. 990. — P. 87—92. — DOI:10.1016/s0304-4165(89)80016-9.
  7. Sobrado. Leaf characteristics and diurnal variation of chlorophyll fluorescence in leaves of the ‘bana’ vegetation of the amazon region (PDF) (2008).
  8. Plant Stress Biology. Personalpages.manchester.ac.uk. Дата обращения 6 января 2017.
  9. Favaretto et al. Differential responses of antioxidant enzymes in pioneer and late-successional tropical tree species grown under sun and shade conditions (англ.) : journal. — 2011.
  10. A. Cartelat, Z.G. Cerovic, Y. Goulas, S. Meyer, C. Lelarge, J.-L. Prioul, A. Barbottin, M.-H. Jeuffroy, P. Gate, G. Agati, I. Moya. Optically assessed contents of leaf polyphenolics and chlorophyll as indicators of nitrogen deficiency in wheat (Triticum aestivum L.) (англ.) : journal. — Field Crops Research Volume 91, Issue 1, pages 35-49, 2005.
  11. Gitelson Anatoly A;Buschmann Claus; Lichtenthaler Hartmut K. The Chlorophyll Fluorescence Ratio F735/F700 as an Accurate Measure of the Chlorophyll Content in Plants (англ.) // Remote Sensing of Environment : journal. — 1999. — Vol. 69, no. 3. — P. 296—302. — DOI:10.1016/S0034-4257(99)00023-1.
  12. Schreiber U., Bilger W.,and Schliwa U. Continuous recording of photochemical and non-photochemical chloropyhll fluorescence quenching with a new type of modulation fluorometer (англ.) // Photosynth. Res : journal. — 1986. — Vol. 10. — P. 51—62. — DOI:10.1007/bf00024185.
  13. Schreiber Ulrich. Detection of rapid induction kinetics with a new type of high-frequency modulated chloropyhll fluorometer (англ.) // Photosynth. Res. : journal. — 1986. — Vol. 9. — P. 261—272. — DOI:10.1007/bf00029749.
  14. Handy PEA: Continuous Excitation Plant Efficiency Analyser. — Norfolk : Hansatech Instruments, 2012. — P. 2.

ЛитератураПравить